Exsanguinación y fijación de tejidos en cadáveres embalsamados
Palabras clave:
Exsanguinación, fijación, solución conservadora, formolResumen
La exsanguinación de los animales, bajo anestesia general, forma parte del procedimiento de preparación de cadáveres destinados a la docencia en Anatomía Veterinaria. Con el propósito de evaluar si la cantidad de sangre perdida durante este proceso tiene influencia sobre el grado de fijación de los tejidos, se realizó un estudio en el que los animales fueron sometidos a anestesia general con propofol (4-6 mg/kg), se les realizó exsanguinación mediante incisión de la arteria carótida común y se midió la cantidad de sangre colectada. Una vez verificada la muerte, los cadáveres fueron perfundidos con una solución fijadora-conservadora por vía arterial, permanecieron a temperatura ambiente por 24 horas y luego fueron refrigerados a 4°C por una semana. Pasado este lapso de tiempo fueron disecados y eviscerados para realizar la evaluación macroscópica. Los aspectos evaluados fueron el grado de fijación de los pulmones, corazón, hígado, bazo. intestinos, riñones y músculos, así como, la presencia o ausencia de olor a putrefacción. Los resultados reflejaron que los animales presentaron en promedio 4,04% de desangrado, los órganos con mayor porcentaje de mala fijación fueron el hígado, bazo, riñones y intestinos. El análisis de los datos se realizó con el paquete estadístico SPSS 19.0 para Windows mediante el uso tablas de contingencia (coeficientes gamma y d de Somers), lo que demostró que no existen diferencias estadísticamente significativas para la fijación entre los animales que perdieron más sangre y los que perdieron menos sangre. Por lo antes expuesto se puede concluir que la cantidad de sangre perdida durante la exsanguinación no tiene influencia significativa sobre el grado de fijación de los tejidos del cadáver.
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Citas
[2] Janczyk P, Weigner J, Luebke-Becker A, Richardson K, Plendl J. A pilot study on ethanol-polyethylene glycol-formalin fixation of farm animal cadavers. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 2011; 124(5-6): 225-227.
[3] Céspedes R, Perozo Prieto E, Pérez-Arévalo M, Riera Nieves M, Vilá Valls V, Reyes K. Anatomía del sistema biliar del hígado en el canino. Rev Cient-Fac Cien V 2008; 18(6): 667-673.
[4] Ajayi I, Shawulu1 J, Ghaji A, Omeiza G, Ode O. Use of formalin and modified gravity-feed embalming technique in veterinary anatomy dissection and practicals. J Vet Med Anim Health 2011; 3(6): 79-81.
[5] Fonseca-Matheus J, Rojas E, Peraza M. Efecto de una solución a base de sulfato de cobre y baja concentración de formol en la preparación de animales para disección. Gac Cs Vet 2013; 18(2): 41-46.
[6] Helander K. Kinetic studies of formaldehyde binding in tissue. Biotech Histochem 1994; 69: 177-179.
[7] Nakamura K, Hatano Y, Hirakata H, Nishiwada M, Toda H, Mori K. Direct vasoconstrictor and vasodilator effects of propofol in isolated dog arteries. Br J Anaesth 1992; 68: 193-197.
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