Establecimiento y multiplicación in vitro de papayas de montaña: Vasconcellea chachapoyensis Y Vasconcellea x Heilbornii

Autores/as

  • Yoiner K. Lapiz Culqui Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.
  • José J. Tejada Alvarado Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.
  • Jegnes B. Meléndez Mori Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.
  • Nuri C. Vilca Valqui Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.
  • Eyner Huaman Huaman Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.
  • Segundo M. Oliva Cruz Instituto de Investigación para el Desarrollo Sustentable de Ceja de Selva (INDES-CES), Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza (UNTRM), Chachapoyas 01001, Perú.

DOI:

https://doi.org/10.51372/bioagro332.7

Palabras clave:

Cultivo de tejidos, desinfección de explantes, reguladores de crecimiento vegetal, segmentos nodales, Vasconcellea

Resumen

La aplicación de las técnicas de cultivo de tejidos en especies de Vasconcellea es una alternativa viable para la propagación de estas especies. Sin embargo, la eficiencia de estas herramientas está condicionada por factores como la contaminación de explantes, el efecto de los reguladores de crecimiento y las especies que se desea propagar. El presente estudio tuvo como objetivo evaluar protocolos de desinfección superficial, con diferentes concentraciones de NaClO y Ca(ClO)2 y tiempos de inmersión, para el establecimiento de explantes. Asimismo, evaluar la acción de las fitohormonas BAP, ANA y AG3 en diferentes concentraciones en la multiplicación in vitro de segmentos nodales de Vasconcellea chachapoyensis y Vasconcellea x heilbornii. Los experimentos se condujeron bajo un diseño completamente al azar con arreglo factorial y los datos se analizaron con la prueba de Kruskal Wallis. Los resultados muestran que al utilizar NaClO al 1,5 % por 10 min se alcanzó solo 10 % de contaminación, siendo V. chachapoyensis la especie que logró mayor viabilidad de explantes en la etapa de establecimiento. Por otro lado, el medio suplementado con BAP generó mayor número de brotes y hojas, mientras que el AG3 indujo mayor elongación de los brotes. Además, cabe mencionar que la especie influyó en la multiplicación, siendo V. x heilbornii la de mejor desarrollo morfológico. Estos resultados señalan la eficacia e importancia de los desinfectantes y reguladores de crecimiento durante el cultivo de tejidos, y representan una alternativa propicia para la micropropagación de especies del género Vasconcellea.

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Citas

Agramonte-Peñalver, D., L. Delgado-Fernández, A. Trocones-Boggiano, M. Pérez-Peralta, D. Ramírez-Aguilar y O. Gutiérrez-Martínez. 2001. Micropropagación del Eucalyptus grandis (Hill ex Maiden) a partir segmentos nodales. Biotecnología Vegetal 1(2): 109-114.

Azofeifa-Delgado, A. 2009. Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía Mesoamericana 20(1): 153-175.

Campos, J., M. Arteaga, S. Campos y J. Chico. 2020. Establecimiento de un protocolo de desinfección y micropropagación in vitro de "caoba" Swietenia macrophylla King (Meliaceae). Arnaldoa 27(1): 141-156.

Chong-Pérez, B., B. Carrasco, H. Silva, F. Herrera, K. Quiroz y R. García‐Gonzales. 2018. Regeneration of highland papaya (Vasconcellea pubescens) from anther culture. Applications in Plant Sciences 6(9): e01182.

Cornejo-Franco, J.F., A. Medina-Salguero, F. Flores, E. Chica, S. Grinstead, D. Mollov y D.F. Quito-Avila. 2020. Exploring the virome of Vasconcellea x heilbornii: The first step towards a sustainable production program for babaco in Ecuador. European Journal of Plant Pathology 157: 961-968.

Dhuique-Mayer, C., Y. Caro, M. Pina, J. Ruales, M. Dornier y J. Graille. 2001. Biocatalytic properties of lipase in crude latex from babaco fruit (Carica pentagona). Biotechnology Letters 23(13): 1021-1024.

Drew, R.A., C.M. O’Brien y P.M. Magdalita. 1998. Development of Carica interspecific hybrids. Acta Horticulturae 461: 285-291.

Gerónimo G.F., B.L.F. Pérez, G. Plata y V.J.G. Aguirre. 2016. Contaminantes en cultivo in vitro. In: Aguirre, G., J. Pierre y L. Leigue (eds.). Aplicación del Cultivo de Tejidos en la Multiplicación y Conservación de los Recursos Fitogenéticos. Universidad Mayor de San Simón. Cochabamba, Bolivia. pp. 57-68.

Gil-Rivero, A.E., E. López-Medina y A. López-Zabaleta. 2016. Efecto sinérgico del ácido indolacético, ácido giberélico y 6-bencilaminopurina en la propagación in vitro de “papaya” Carica papaya L. (Caricaceae). Arnaldoa 23(2): 577-586.

Hernández, Y. y M. E. González. 2010. Efectos de la contaminación microbiana y oxidación fenólica en el establecimiento in vitro de frutales perennes. Cultivos Tropicales 31(4): 1-5.

Jádan, M.G., R. Gómez-Kosky y I. Bermúdez-Caraballoso. 2016a. Obtención de plantas madre de Vasconcellea x helbornii (Badillo) Badillo a partir de estacas en condiciones semicontroladas. Biotecnología vegetal 16(1): 13-20.

Jádan, M.G., K. Basantez, R. Gómez-Kosky y I. Bermúdez-Caraballoso. 2016b. Estableci-miento in vitro de brotes de Vasconcellea x helbornii (Badillo) Badillo. Biotecnología Vegetal 16(2): 67-72.

Manshardt, R.M. y T.F. Wenslaff. 1989. Zygotic polyembryony in interspecific hybrids of Carica papaya and C. cauliflora. Journal of the American Society for Horticultural Science 114(4): 684-689.

Millones, C.E. 2019. Propagación in vitro de babaco (Vasconcellea x heilbornii) del distrito de Luya, región Amazonas. Revista Científica UNTRM: Ciencias Naturales e Ingeniería 2(1): 45-51.

Murashigue, T. y F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15(3): 473-497.

Okereke, O.E., H.O. Akanya, G.H. Ogbadu, E.C. Egwim, V.A. Etim y S.A. Akande. 2016. Development and optimization of a surface sterilization protocol for the tissue culture of Pleurotus tuber-regium (fr) sing. and Auricularia auricula-judae. International Journal of Biochemistry, Bioinformatics and Biotechnology Studies 1(2): 1-9.

Palei, S., D.K. Dash y G.R. Rout. 2019. Standardization of in vitro protocol for plant regeneration of Carica papaya cv. Co8 through indirect organogénesis. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry 8(3): 1954-1956.

Posada, L., R. Gómez, J. Gallardo, M. Reyes y I. Herrera. 2004. Establecimiento in vitro de ápices de plantas de campo del hibrido cubano de papaya IBP 42-59. Biotecnología Vegetal 4(3): 153-158.

Posada, L. 2005. Aplicaciones de la biotecnología a la propagación de la papaya. Biotecnología Vegetal 5(2): 67-79.

Ramesh, A.N., D.B. Santhosh, D. Suresh, K. Radha, K. Rashmi y K. Hajira. 2018. In vitro regeneration of papaya (Carica papaya L.) Variety Surya. International Journal of Pure & Applied Bioscience 6(4): 456-461.

Robles-Carrión, A.R., L. Herrera-Isla y R. Torres-Gutiérrez. 2016. El babaco (Vasconcellea heilbornii var. Pentagona Badillo). Principales agentes fitopatógenos y estrategias de control. Centro Agrícola 43(2): 83-92.

Scheldeman, X., L. Willemen, G. Coppens d’Eeckenbrugge, E. Romeijin-Peeters, M.T. Restrepo, J. Romero-Motoche et al. 2007. Distribution, diversity and environmental adaptation of highland papayas (Vasconcellea spp.) in tropical and subtropical America. Biodiversity and Conservation. 16(6): 1867-1884.

Scheldeman, X., T. Kyndt, G.C. Coppens d’Eeckenbrugge, R. Ming, R. Drew, B.V. Droogenbroeck et al. 2011. Vasconcellea. In: C. Kole (ed.). Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources. Tropical and Subtropical Fruits. Springer. Heidelberg, Germany. pp. 213-249.

Solis, R., J. Olivera y R.S. La Rosa. 2012. Propagación in vitro de Carica papaya var. PTM-331 a partir de meristemos apicales. Revista Peruana de Biología 18(3): 343-347.

Ticona, J. y M.L. Triguero. 2019. Evaluación de tres métodos de desinfección para el establecimiento in vitro de papaya (Carica papaya L.) en la Estación Experimental Sapecho. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales 6(1): 24-29.

Ticona, J. y M.L. Triguero. 2020. Evaluación del comportamiento in vitro de dos variedades de papaya (Carica papaya L.) mediante embriogénesis somática en la Estación Experimental Sapecho. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales 7(1): 55-61.

Tineo, D., D.E. Bustamante, M.S. Calderon, J.E. Mendoza, E. Huaman y M. Oliva. 2020. An integrative approach reveals five new species of highland papayas (Caricaceae, Vasconcellea) from northern Peru. PLoS ONE 15(12): e0242469.

Uribe, M.E., C. Delaveau, M. Garcés y R. Escobar. 2008. Efecto de asepsia y fitohormonas en el establecimiento in vitro de Berberidopsis corallina, a partir de segmentos nodales. Bosque 29(1): 58-64.

Vélez-Mora, D.P., R. Armijos y M. Jordán. 2015. Enhancement of germination, hyperhydricity control and in vitro shoot formation of Vasconcellea stipulata Badillo. Revista Colombiana de Biotecnología 18(2): 16-21.

Publicado

2021-04-29

Cómo citar

Lapiz Culqui, Y. K., Tejada Alvarado, J. J., Meléndez Mori, J. B., Vilca Valqui, N. C., Huaman Huaman, E., & Oliva Cruz, S. M. (2021). Establecimiento y multiplicación in vitro de papayas de montaña: Vasconcellea chachapoyensis Y Vasconcellea x Heilbornii. Bioagro, 33(2), 135-142. https://doi.org/10.51372/bioagro332.7

Número

Sección

Artículos