Efecto de la aplicación de bioestimulantes y Trichoderma sobre el crecimiento en plántulas de maracuyá (Passiflora edulis Sims) en vivero
Palabras clave:
Agente biocontrolador, Bacillus, promotor de crecimiento, quitosanoResumen
El uso de bioestimulantes y biocontroladores en viveros puede ayudar a obtener plántulas de alta calidad. Se evaluó el efecto de la aplicación de bioestimulantes con y sin inoculación de Trichoderma harzianum sobre el crecimiento y desarrollo en plántulas de maracuyá. El ensayo se realizó en una finca ubicada en el municipio Santiago Mariño del estado Aragua, Venezuela, utilizando un diseño de experimento completamente aleatorizado con un arreglo factorial de 5x2 con tres repeticiones, siendo los factores cuatro bioestimulantes comerciales (Terrahumus, Estimulante Plus Manvert, Biorend y Biovida Activador) más un testigo sin aplicación del bioestimulante, y Trichoderma harzianum (presencia o ausencia) para un total de 10 tratamientos. Se evaluaron las siguientes variables: números de hojas (NH), altura de la planta (AP), índice de clorofila (IC), longitud de la raíz (LR), peso seco de la parte aérea (PSPA) y de la parte radical (PSPR). No existió interacción entre los factores evaluados. La aplicación de los bioestimulantes ejerció un efecto positivo en las variables biométricas NH y PSPR con respecto al testigo. Hubo diferencias significativas entre la aplicación de T. harzianum y el testigo, con incrementos de 23,75; 23,84; 12, 27; 88 y 64.3 % para NH, AP, LR, PSPA y PSPR, respectivamente. Se concluye que el uso de sustancias estimulantes y T. harzianum mejora parámetros relacionados con el crecimiento y desarrollo en plántulas de maracuyá.
Descargas
Citas
2. Alkooranee, J., T. Aledan, A. Ali, G. Lu, X. Zhang, J. Wu, C. Fu y M. Li1. 2017. Detecting the hormonal pathways in oilseed rape behind induced systemic resistance by Trichoderma harzianum TH12 to Sclerotinia sclerotiorum. Plos One 12(1): 1-21. e0168850.
3. Asari, S., Tarkowská, D., Rolčík, J., Novák, O., Palmero, D. V., Bejai, S., y Meijer, J. (2017). Analysis of plant growth-promoting properties of Bacillus amyloliquefaciens UCMB5113 using Arabidopsis thaliana as host plant. Planta 245(1): 15-30.
4. Aslantas, R., R. Cakmakcı y F. Sahin. 2007. Effect of plant growth promoting rhizobacteria on young apple tree growth and fruit yield under orchard conditions. Sci. Hort. 111: 371-377.
5. Azarmi, R., B. Hajieghari y A. Giglou. 2011. Effect of Trichoderma isolates on tomato seedling growth response and nutrient uptake. African Journal of Biotechnology 10(31): 5850-5855.
6. Barroso, F., P. Pereira, D. Milan, W. Silva, N. Faria, F. Rodrigues y D. Costa. 2019. Growth promotion of Parsley (Petroselinum crispum L.) using commercial strains of Trichoderma spp. Journal of Agricultural Science 11(4): 493-499.
7. Basso, C., G. Rodríguez, G. Rivero, R. León, M. Barrios y G. Díaz. 2019. Respuesta del cultivo de maracuyá (Passiflora edulis Sims) a condiciones de estrés por inundación. Bioagro 31(3): 185-192.
8. Calvo, P., L. Nelson y J. Kloepper. 2014. Agricultural uses of plant biostimulants. Plant Soil 383: 3-41.
9. Constantino, M., R. Gomez, J. Álvarez, J. Pat y E. Espín. 2011. Efecto de la inoculación de Azotobacter chroococcum y Glomus intraradices en el crecimiento y nutrición de plántulas de papaya en fase de vivero. Agronomía Costarricense 35(1): 15-31.
10. Cubillos, J., N. Valero y L. Mejía. 2011. Trichoderma harzianum como promotor del crecimiento vegetal del maracuyá (Passiflora edulis var. flavicarpa Degener). Agron. Colomb. 27(1): 81-86.
11. Da Silva, G., I. Lucena, F. Albano y J. Antiveli. 2013. Estado nutricional e clorofila foliar do maracujazeiro amarello en funçao de biofertilizantes, calagen e adubaçao con N e K. Rev. de Ciencias Agrarias 36(2): 163-173.
12. Díaz, G. y G. Rodríguez. 2016. Efecto de la aplicación de tres bioestimulantes sobre el desarrollo y productividad en plantas de guayaba (Psidium guajava L.) ‘Cubana Roja’. Rev. Fac. Agron. (UCV) 42 (1): 1-13.
13. Donoso, E., G. Lobos y N. Rojas. 2008. Efecto de Trichoderma harzianum y compost sobre el crecimiento de plántulas de Pinus radiata en vivero. Bosque 29(1): 52-57.
14. du Jardin, P. 2015. Plant Biostimulants: Definition, concept, main categories and regulation. Scientia Horticulturae 196: 3-14.
15. Erturk, Y., S. Ercisli, A. Haznedar y R. Cakmakci. 2010. Effects of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR)on rooting and root growth of kiwifruit (Actinidia deliciosa) stem cuttings. Biol Res 43: 91-98.
16. García, R., M. Arcia, M. Pérez y R. Riera. 2012. Efecto de Trichoderma sobre el desarrollo de papa y el biocontrol de Rhizoctonia bajo tres tiempos de inicio de aplicación. Agronomía Trop. 62(1-4): 77-95.
17. Glick, B. 2014. Bacteria with ACC deaminase can promote plant growth and help to feed the world. Microbiol Res. 169: 30-39.
18. Harman, G.E. 2006. Overview of mechanisms and uses of Trichoderma spp. Phytopathology 96: 190-194.
19. Hooks, C. R. R., Wright, M. G., Kabasawa, D. S., Manandhar, R. y Almeida, R. P. P. 2008. Effect of banana bunchy top virus infection on morphology and growth characteristics of banana. Annals of Applied Biology 153(1): 1-9.
20. Kandel, S., A Firrincieli, P. Joubert, P. Okubara, N. Leston, K. McGeorge y S. Doty. 2017. An in vitro study of bio-control and plant growth promotion potential of Salicaceae endophytes. Front Microbiol. 8: 386.
21. Karlidag, H., A. Esitken, M. Turan y F. Sahin. 2007. Effects of root inoculation of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on yield, growth and nutrient element contents of leaves of apple. Sci. Hort. 114: 16-20.
22. Kavoo- Mwangia, A., E. Kahangia, E. Atekaa, J. Ongusoa, R. Mukhongob, E. Mwangib, y J. Jefwa. 2013. Growth effects of microorganisms based commercial products inoculated to tissue cultured banana cultivated in three different soils in Kenya. Applied Soil Ecology 64: 152–162.
23. Larez, C. 2008. Algunas potencialidades de la quitina y el quitosano para usos relacionados con la agricultura en Latinoamérica. Revista UDO Agrícola 8 (1): 1-22.
24. Liu, K., J. McInroy, C. Hu y J. Kloepper. 2018. Mixtures of plant-growth-promoting rhizobacteria enhance biological control of multiple plant diseases and plant-growth promotion in the presence of pathogens. Plant Disease 102: 67-72.
25. Majeed, A., M. Abbasi, S. Hameed, A. Imran, N. Rahim. 2015. Isolation and characterization of plant growth promoting rhizobacteria from wheat rhizosphere and their effect on plant growth promotion. Front Microbiol 6:198.
26. Majeed, A., Z. Muhammad y H. Ahmad. 2018. Plant growth promoting bacteria: role in soil improvement, abiotic and biotic stress management of crops. Springer, German. Plant Cell Reports. 37(3): 1599-1609.
27. Marrero, M., I. Reynaldo, G. Cabrera y M. Martinez. 1997. Hidrolizado de quitosano como estimulador del crecimiento de vitroplantas de naranjo agrio (Citrus aurantium). Cultivos Tropicales 18(1): 38-39.
28. Mateus-Cagua, D.M. y G. Rodríguez-Yzquierdo. 2019. Effect of biostimulants on the dry matter accumulation and gas exchange in plantains plants (Musa AAB). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas 13(2): 151-160.
29. Mohamed, H.I. y E.Z. Gomaa. 2012. Effect of plant growth promoting Bacillus subtilis and Pseudomonas fluorescens on growth and pigment composition of radish plants (Raphanus sativus) under NaCl stress. Photosynthetica 50(2): 263-272.
30. Morales-Payan, J. y W. Stall. 2004. Passion fruit (Passiflora edulis) transplant productionis affected by selected biostimulants. Proc. Fla. State Hort. Soc. 117: 224-227.
31. Otieno, N., R. Lally, S. Kiwanuka, A. Lloyd, D. Ryan, J. Germaine y D. Dowling 2015. Plant growth promotion induced by phosphate solubilizing endophytic Pseudomonas isolates. Front Micro-Biol 6: 745.
32. Pérez-Torres, E., A. Bernal-Cabrera, P. Milanés-Virelles, Y. Sierra-Reyes, M. Leiva-Mora, S. Marín-Guerra y O. Monteagudo-Hernández. 2018. Eficiencia de Trichoderma harzianum y sus filtrados en el control de tres enfermedades fúngicas foliares en arroz. Bioagro 30(1): 17-26.
33. Raheem, A., A. Shaposhnikov, A. Belimov, I. Dodd y B. Ali. 2018. Auxin production by rhizobacteria was associated with improved yield of wheat (Triticum aestivum L.) under drought stress. Arch Agron Soil Sci. 64: 574-587.
34. Rodríguez, G. 2016. Evaluación del manejo del cultivo parchita maracuyá (Passiflora edulis Sims) en ciclo anual, con riego deficitario controlado y control biológico de Fusarium spp. a base de Trichoderma spp. Tesis. Universidad Central de Venezuela. Maracay. 200 p.
35. Rodríguez, G., F. Leal y B. Naranjo. 2012. Situación actual de los cultivos Frutales de mayor importancia en Venezuela. Revista Facultad de Agronomía UCV. Edición Especial Alcance 1: 212-221.
36. Rodríguez, G., H. Pradenas, C. Basso, M. Barrios, R. León y M. Pérez. 2020. Efecto de dosis de nitrógeno sobre la agronomía y fisiología de plantas de maracuyá. Agronomía Mesoamericana 31(1): 117-128.
37. Sánchez, A., J. Sánchez, M. Juárez, J. Jordá y D. Bermúdez. 2006. Improvement of iron uptake in tablegrape by addition of humic substances. J. Plant. Nutr. 29: 259-272.
38. Santos, H., S. Mello y J. Peixoto. 2010. Associação de isolados de Trichoderma spp. e ácido indol-3-butírico (AIB) na promoção de enraizamento de estacas e crescimento de maracujazeiro. Biosci. J. 26(6): 966-972.
39. Saravanakumar, D., C. Vijayakumar, N. Kumar y R. Samiyappan. 2007. PGPR-induced defense responses in the tea plant against blister blight disease. Crop Protection 26: 556-565.
40. Shameer, S. y T. Prasad. 2018. Plant growth promoting rhizobacteria for sustainable agricultural practices with special reference to biotic and abiotic stresses. Plant Growth Regulation 84(2): 1-13.
41. Singh, A., N. Shukla, N. Kabadwal, A. Tewari y J. Kumar. 2018. Review on Plant-Trichoderma-Pathogen Interaction. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci. 7(2): 2382-2397.
42. Torres, G y M. Añez. 2008. Efecto de aplicaciones foliares sobre el crecimiento de plántulas de parchita (Passiflora edulis f. flavicarpa Degener) en vivero. Rev. Unellez Cienc. Tec. 26: 54-61.
43. Tortolero, J. y D. Pavone. 2012. Efecto de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia solani y algunos parámetros fisiológicos en Zea mays L. bajo condiciones de vivero. Fitopatología Venezolana 25: 10-15.
44. Veneros, R., M. Chaman., E Araujo y F. Ramirez. 2014. Efecto de acidos húmico y fúlvico en el crecimiento de Passiflora ligularis cultivada en condiciones de invernadero. Rebiol 34(1): 13-18.
45. Veobides, H., F. Gurudi y V. Váquez. 2018. Las sustancias húmicas como bioestimulantes de plantas bajo condiciones de estrés ambiental. Cultivos Tropicales 39(4):102-109
46. Zheng, B., X. Hao, K. Ding, G. Zhou, Q. Chen, J. Zhang y Y. Zhu. 2017. Long-term nitrogen fertilization decreased the abundance of inorganic phosphate solubilizing bacteria in an alkaline soil. Sci Rep 7: 42284.
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Derechos del/de autor/es a partir del año de publicación
Esta obra está bajo la licencia:
Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)
Las opiniones expresadas por los autores no necesariamente reflejan la postura del editor de la publicación ni de la UCLA. Se autoriza la reproducción total o parcial de los textos aquí publicados, siempre y cuando se cite la fuente completa y la dirección electrónica de esta revista. Los autores(as) tienen el derecho de utilizar sus artículos para cualquier propósito siempre y cuando se realice sin fines de lucro. Los autores(as) pueden publicar en internet o cualquier otro medio la versión final aprobada de su trabajo, luego que esta ha sido publicada en esta revista.
Bioagro se reserva el derecho de realizar modificaciones textuales y ajustes técnicos a las figuras de los manuscritos, de acuerdo con el estilo y especificaciones de la revista.